细胞冻存液是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于一196~c液氮中低温保存，可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来，这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞，可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种，起到了细胞保种的作用。除此之外，还可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。 细胞冻存时向培养基中加入保护剂--终浓度5％．15％的甘油或二甲基亚砜（dmso），可使溶液冰点降低，加之在缓慢冻结条件下，细胞内水分透出，减少了冰晶形成，从而避免细胞损伤。 采用"慢冻快融"的方法能较好地保证细胞存活。标准冷冻速度开始为-1 到 -2℃／min，当温度低于-25℃时可加速，到-80℃之后可直接投入液氮内（-196℃）。复苏细胞时则直接将装有细胞的冻存管投入40℃热水中迅速解冻。
（一）细胞冻存
1．取待冻存的细胞用胰酶消化（见相关实验细胞传代培养部分），用培养基将细胞冲洗下来。800 r/min离心5 min，弃上清收集细胞。如果是悬浮生长的细胞，则可直接离心收集细胞。
2．加入适量冻存液（10％甘油+90％培养基，或者10％dmso+90％培养基）制成细胞悬液。细胞浓度宜大，3×106个／ml左右，并可适量增加牛血清浓度至20％。
3．细胞悬液装入冻存管中。用胶布封裹，做好标记（写上细胞种类、时间及冻存条件等）。
4．冻存管在4℃下存放30 min，转放-20℃ 1.5～2 h，再转人-70℃ 4-12 h后即可转移到液氮内（-196℃），注意进行登记。
（二）细胞复苏
1．取一搪瓷杯盛上适量自来水加热至40℃左右。
2．从液氮中取出冻存管立即投人40℃水中迅速解冻。
3．取出冻存管，用75％酒精清洁管口，打开。
4．离心去上清收集细胞，用无血清培养基洗1次，加人3 ml新鲜培养基，于小培养瓶中培养。
5．每日观察细胞生长情况，如果死细胞较多，复苏次日应换液。待细胞长满后可进行传代培养。
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